1 流行病学
病原。鹅细小病毒(GPV)是细小病毒科、细小病毒属的成员,其生物学特性与番鸭细小病毒类似,通过电镜观察发现病毒颗粒为圆形或者六角形,呈20面体对称的晶格排列,直径大约为20~24nm,没有囊膜,属于DNA病毒。由于该病毒不具有囊膜,因此具有较强的抵抗环境的能力,如在56℃下经过3h加热才会失活,且对胰酶、去污剂以及低pH条件等不敏感。
易感动物。在自然感染条件下,只有雏鹅和雏番鸭可感染发病,其他禽类和哺乳动物不会感染。3~20日龄的雏鹅易感,且不同日龄、不同免疫情况的鹅群以及不同地区在发病率和病死率存在一定差异,但越小日龄发病有越高的病死率。
传播途径。该病主要经由粪口途径进行传播,即该病的主要传播方式是直接接触病鹅或者通过污染病毒的饲料、用具、种蛋等进行机械传播。
2 临床症状及剖检变化2.1 临床症状小于15日龄的雏鹅无论是自然感染还是人工感染,潜伏期通常都在3~5天;大于15日龄的易感雏鹅无论是自然感染还是人工感染,潜伏期相比于前者要延长1~2天。
该病主要是导致病鹅消化系统和神经系统出现症状。根据病程持续时间的长短可分成三种类型,即最急性型、急性型和亚急性型。
最急性型。多是小于7日龄的雏鹅易发,其往往突然出现发病和快速死亡,一般在精神沉郁后的数小时内就变得衰弱,或者倒地双腿胡乱划动,很快死亡。另外,患病雏鹅的鼻孔存在少量的浆液性分泌物,只需要几天就会蔓延至全群。
急性型。多是7~14日龄的雏鹅易发,患病后主要表现出精神沉郁,食欲不振或者废绝。经过大约12h,病鹅往往可见神情呆滞,缩颈闭眼,行动缓慢、无力,无法稳定站立,经常蹲伏,停止采食,但增加饮水,排出黄绿色或者黄白色的稀粪,且粪便附着在肛门周围。另外,病鹅张口呼吸,鼻孔四周污秽不洁,喙端发绀,蹼颜色暗淡,嗉囊变得松软,里面存在液体和气泡,机体脱水,眼结膜干燥,最终由于休克而死,临死前会有抽搐或者双腿麻痹的现象,病程通常可持续大约2天。
亚急性型。通常在流行后期出现,多是大于14日龄的雏鹅易发,患病后表现出精神不振,采食减少或者停止,鼻孔存在分泌物,动作缓慢,无法稳定站立,往往蹲卧,伴有腹泻,且粪便污染肛门周围。病程持续时间略长,通常为3~7天或者更久,均能够自愈。
2.2 剖检变化主要是肠道发生病变,即小肠各段都发生充血、严重肿胀,存在大量黏液,黏膜上存在少许蛋花样的黄白色纤维素渗出物,且中下肠段覆盖一层淡黄色的假膜,有时可见细条状的凝固物,导致小肠呈现"香肠状"病变。
最急性型。剖检可见十二指肠黏膜由于充血而呈现弥漫红色,且表面存在大量的黏液。
急性型。剖检可见肠道发生特征性病变,多是小肠的中段和下段出现,尤其是接近回盲部和卵黄囊柄的肠段,外观明显膨大,其体积往往可达到正常肠段的3~4倍,如同香肠状,触感紧实。剪开膨大处的肠壁,发现肠壁变薄、紧张,肠腔中存在凝固的淡黄色或者淡灰白色的栓子状物,其是由凝固的纤维素性渗出物和坏死肠黏膜组织构成,导致肠腔被彻底堵塞。
亚急性型。剖检主要是发生急性卡他性肠炎,同时肝脏呈黄红色或者深紫红色,并发生肿大,胆囊明显膨大,含有大量暗绿色的胆汁;脾脏和胰腺都发生充血,有时会存在灰白色的坏死点。
3 实验室诊断技术3.1 血清学诊断技术病毒中和试验。其基本原理是抗原抗体反应,即在病毒的关键性位点结合对应的抗体后就不能够正常吸附和感染,从而无法导致细胞病变(CPE),这是一种最常用旳血清学诊断方法。
酶联免疫吸附试验(ELISA)。该法是目前生物学领域中一种最常用的检测技术,且已经逐渐作为常规手段用于检测动物流行的病原体。该技术具有安全性好、操作简单、敏感性高、结果快速的优点,常用的有双夹心ELISA法、斑点ELISA法,通常只需要3~4h即可做出诊断,适合在鹅群发病早期进行诊断。但由于该技术需要制备单克隆抗体,使其在在基层兽医的临床上推广受到一定限制。
免疫荧光诊断法。该方法包括直接荧光法和间接荧光法。其中直接荧光法是实验室中比较多用的检查方法,是指在抗体或者抗原上标记荧光素,接种用其进行抗原抗体反应,其特点是敏感性高、特异性好、耗时短等,但由于依旧存在非特异性染色的问题,导致判断结果存在较大的主观性;间接免疫荧光法是指将待检病料制成触片或者切片,接着分别滴加标准抗GPV的阴性、阳性血清,最后加入用荧光标记的二抗进行显色,但要求必须配置使用荧光显微镜。
胶体金免疫层析技术。该技术已经在多方面的检测中被应用,其提点是操作简便、不需复杂仪器、特异性强、敏感性高,且检测结果直观等。
3.2 分子生物学检测技术PCR技术。该技术是目前各种病毒学诊断技术中敏感性最高的一种检测方法,其优点是特异性好,能够一次性对较大量的标本进行检测,无需要进行病毒分离和提纯。
原位杂交技术。该技术是通过地高辛标记的GPVSS DNA探针来检测鹅细小病毒,这是由于该探针只可与病毒的核酸发生阳性反应,而不会与鹅胚尿囊液、正常鹅胚组织以及鹅肝等组织发生反应,因而其灵敏度非常高、特异性非常强。另外,该技术能够准确且快速地、检测出是否存在鹅细小病毒核酸,且有较高的重复性。
环形等温扩增技术。该技术的要点是针对目的片段的6个区域设计4条特异性引物,在大约65℃恒温条件下,借助链置换DNA聚合酶对目的片段进行高效扩增,其优点是操作简便、灵敏度高、特异性强、耗时短等,且无需任何贵重的仪器,只需要一个水浴锅即可完成操作,通常在兽医基层部门的实验室诊断和野外的临床诊断中适用。
4 防控措施4.1 疫情处理发现病鹅后立即隔离,对病死鹅必须采取深埋处理,并先清扫干净鹅舍,接着使用高压水冲洗,然后泼洒2%氢氧化钠溶液进行消毒,同时将食槽、饮水器浸泡在1%高锰酸钾溶液进行消毒,还要配合进行带鹅消毒,每周至少3次,连续进行2周。
对于没有发病的雏鹅,可每只皮下注射0.5~0.8mL高效价抗血清或者1.0mL精制蛋黄抗体,注意在血清或蛋黄抗体中可添加适量的广谱抗菌药;对患病雏鹅,可每只皮下注射1.0mL高效价抗血清或者1.5mL精制蛋黄抗体,同时按每千克饮水添加4g电解多维混饮,可使治愈率提高,并减少发生应激。
4.2 免疫接种目前,预防该病的发生主要是给鹅群免疫接种鹅细小病毒疫苗,可选用活疫苗和灭活疫苗两种,其中灭活疫苗具有安全、便于贮存以及免疫期长的优点,适合在临床上应用。
推荐免疫程序:种鹅在开产前20天进行首免,在120日龄进行二免,每次每只接种1mL疫苗;雏鹅在3日龄进行首免,每只接种0.5mL疫苗,之后在90日龄进行二免,每只接种1.0mL疫苗。对于没有母源抗体的雏鹅,由于会存在抗体空白期,最好在出壳后配合使用高免疫血清或者卵黄抗体来预防发病。